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脂質(zhì)體瞬時轉(zhuǎn)染
1、細胞H9C2 (Hela) 6孔板Hela1x10°/孔。
2、轉(zhuǎn)染前換上沒有抗sheng素的DMEM+胎清(10%)。
3、將質(zhì)粒DNA (約2-4ul) 2ul 加入dorf管中+DMEM至50u1。
4、脂質(zhì)體5ul補培養(yǎng)基至50ul混勻靜止5分鐘(質(zhì)粒與脂質(zhì)體比例為1:2或1.5:2.5)。
5、將含有脂質(zhì)體的培養(yǎng)基與含質(zhì)粒的混合總體積100ul室溫放置30分鐘。
6、吸取混合物均勻加入每一個孔中。
7、將6孔板放入培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)6小時后吸出培養(yǎng)基換上新配置的培養(yǎng)基DMEM6ml+胎清600u1+三抗300u1。
8、培養(yǎng)24小時。
軟瓊脂培養(yǎng)克l隆形成試驗基本步驟:
(1)取對數(shù)生長期細胞,用0.25%胰蛋白酶消化并輕輕吹打,使之成為單細胞,作活l細胞計數(shù),用含20%胎牛血l清的DMEM培養(yǎng)液調(diào)整細胞密度至1x106細胞/L。然后根據(jù)實驗要求作梯度倍數(shù)稀釋。
(2)用蒸餾水分別制備出1.2%和0.7%兩個濃度的低溶點瓊脂糖液,高壓滅菌后,維持在40日中不會凝固。
(3)按1:1比例使1.2%的瓊脂糖和2xDMEM培養(yǎng)基(含有2x和20%的小牛血l清)混合后,取3mL混合液注入直徑6cm平皿中(10cm平皿加7~ 10mL),冷卻凝固,可作底層瓊脂置CO2溫箱中備用。
(4)按1:1比例讓0.7%的瓊脂糖和2xDMEM培養(yǎng)基在無菌試管中相混以后,再向管中加入0.2mL的細胞懸液,充分混勻,細胞實驗外包哪家好,注入鋪有1.2%瓊脂糖底層平皿中,逐形成雙瓊脂層。待上層瓊脂凝固后,置入37回5%CO2溫箱中培養(yǎng)10~14天。
(5)把平皿放置在倒置顯微鏡下,觀察細胞數(shù)。計算形成率。軟瓊脂培養(yǎng)法常用檢測腫l瘤細胞和轉(zhuǎn)化細胞系。試驗中瓊脂與細胞相混時,瓊脂溫度不宜超過40日。接種細胞的密度每平方厘米不超過35個,一般6cm的平皿接種1000個細胞。正常細胞在懸浮狀態(tài)下不能增殖,不適用于軟瓊脂克l隆形成試驗。
軟瓊脂集落形成率實驗(軟瓊脂克l隆)
將1.2%低熔點瓊脂糖與2x細胞培養(yǎng)基以1:1的體積比混合制備0.6%的底層瓊脂,細胞實驗外包公司,6孔板中每個孔1.4ml溫室凝固,取對數(shù)期細胞,胰酶消化后吹散成單個細胞懸液,計數(shù),并調(diào)細胞濃度為10000個/ml,將0.6%低熔點瓊脂糖與2x細胞培養(yǎng)基以1:1的體積比混合,制備0.3%的上層瓊脂,每孔加1ml 上層瓊脂和100ul單細胞懸液(約1000ell/wel), 混勻,室溫凝固。置于37目,5%CO2的細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)2-3周,計數(shù)含50個細胞以上得克l隆,計算細胞集落形成率,細胞實驗外包選哪家,Spotll 采集圖像。
關于細胞培養(yǎng)的常見問題
Q:培養(yǎng)液到底要不要加雙抗(青&鏈)?
A:雙抗不是細胞生長必需的。我們培養(yǎng)細胞時不常規(guī)使用,因為連續(xù)使用會促進耐藥性細胞株的產(chǎn)生,導致輕度污染持續(xù)存在。一旦將從培養(yǎng)液中去除,這種輕度污染終將發(fā)展成為大規(guī)模污染。具體情況,可根據(jù)自己實驗室的環(huán)境,自行決定是否使用雙抗。
Q:細胞培養(yǎng),上海細胞實驗,能更換成其它種類的培養(yǎng)基嗎?
A:我們強烈建議好使用細胞提供機構或細胞庫推薦的生長培養(yǎng)液。有些細胞可能會適應在不同培養(yǎng)基中生長,在做好保種的條件下,可以分出部分細胞做測試。
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